不同花期金花茶花的品质和产量比较

　　摘要：【目的】明確金花茶花的最佳采收期，为会花茶花的采收和综合丌发利用提供科学依据。【方法】对金花茶花的花蕾期、鱼嘴期、半丌期、盛丌期和凋谢期等5个小同花期的主要活性成分(总黄酮、茶多酚、总皂苷和粗多糖)和主要营养成分(氨基酸、蛋白质、粗脂肪、粗纤维和灰分)进行含量测定、比较。【结果】半丌期会花茶花的总黄酮、茶多酚和总皂苷含量最高，其次为鱼嘴期和盛丌期。会花茶花不同花期均含有7种必需氨基酸。鱼嘴期总氨基酸含量、药效氨基酸含量和鲜味氨基酸含量均较其他4个时期高，分别为5.46. 3.35和1.35 g·hg-1。5个小同花期金花茶花的氨基酸比值系数分( Score of amino acid ratio coefficient，SRC)分别为59.31、62.08、56.67、57.84和57.75，蛋氨酸+胱氨酸为第一限制氨基酸;鱼嘴期的蛋白质含量最高，为5.85 g·hg-1。各花期中均含有较多的纤维，含量为16.8- 17.5 g·hg-1。凋谢期脂肪的含量最高，其次是鱼嘴期。各花期的灰分含量为3.64- 3.88 g·hg-1。营养成分含量的因子分析综合得分排序为：花蕾期>鱼嘴期>半丌期>凋谢期>盛丌期。考察不同花期金花茶花的单花重和形态表明鱼嘴期和半丌期的商品性状接近，同时产量较传统采收期增加ll.9%。【结论】鱼嘴期和半丌期的金花茶花分别具有较高的活性成分含量、营养成分含量和产量。

　　关键词：金花茶花;花期;活性成分;营养成分;产量;因子分析

　　引言

　　【研究意义】金花茶(Camellia nitidissima Chi)为山茶科( Theaceae)山茶属(Camellia)常绿灌木或小乔木，分布于我国广西防城金花茶国家级自然保护区内的阔叶林中，自然居群数量少，野生分布生境狭窄，是我国一级保护植物和《国际生物多样性公约》附属Ⅱ物种[1]，其花色金黄，形态美观，素有“茶族皇后”“植物界大熊猫”的美称[2]。金花茶的叶和花是传统的壮族民间用药，据《广西民族药简编》记载和相关临床研究结果[3-4]，金花茶在治疗月经不调、痢疾、便血、高血壓、高血脂、肿瘤、尿路感染、咽喉炎和预防癌症等方面具有重要作用，并已收载为新食品原料名录。由于其具有重要的观赏价值和一定的药用价值，被过度开垦、滥挖滥采而严重破坏，人工栽培又较少，花量少，所以被视为稀缺尊贵珍品。随着金花茶药理和保健功效逐渐被人们认知，市场需求剧增，广西、福建、广东等地相继开展了引种栽培[5-7]。【前人研究进展】植物化学成分的积累与生长时期相关，金银花[8]、曼陀罗花[9]、紫锥菊[10]等以花入药植物的采收期已有研究报道。金花茶花的主要化学成分除了蛋白质、脂肪、粗纤维、氨基酸和矿质元素等营养成分以外，还含有黄酮、茶多酚、皂苷和多糖等生理活性物质[11]，不同花期金花茶花的化学成分含量存在差异[12]。【本研究切入点】金花茶花期长，生产上普遍存在为图省时省力，待花全部开放后一次采收的现象，难免对金花茶花的品质产生影响。因此非常有必要研究金花茶的最佳采收期。【拟解决的关键问题】为此本研究考察不同花期金花茶花的活性成分、营养成分、产量和商品形态变化，从而确定了金花茶花最佳采收期，以期指导金花茶种植，为控制金花茶花的品质及系列产品开发提供科学依据。

　　1材料与方法

　　1.1材料与试剂

　　供试金花茶为防城普通种金花茶(Camellianitidissima Chi，经黄连冬高级T程师鉴定)，由福建世纪金花茶科技有限公司提供。金花茶植株花蕾在开放前，有一个较长的生长发育时期，人为地划分为5个时期：花蕾期(花苞将开未开)、鱼嘴期(花冠微微分离，可见部分花蕊)、半开期(花冠绽开至刚好可见全部花蕊)、盛开期(花冠完全绽开)、凋谢期(花冠边缘外翻，花蕊开始凋落)(图1)。采收后，低温冷冻干燥，备用。粉碎，过60目筛，4℃保存备用。

　　芦丁(中国食品药品检定研究院，ID：OHZA-RZQM);人参皂苷Rgl(中国食品药品检定研究院，ID：TZH4-YDDW);没食子酸(中国食品药品检定研究院，ID：QFFJ-8D6L);葡萄糖、乙醇、甲醇、正丁醇、福林酚、苯酚、冰醋酸、香草醛、无水碳酸钠、亚硝酸钠、硝酸铝、氢氧化钠、浓硫酸、高氯酸均为分析纯;实验用水均为蒸馏水。

　　1.2仪器与设备

　　KQ-400DE超声波清洗仪，昆山市超声仪器有限公司生产;UV1600紫外可见分光系统，北京北分瑞利分析仪器有限公司生产;R-210旋转蒸发仪，瑞士BUCHI公司生产;BP210十万分之一天平，Sartorius公司生产;L-9100氨基酸自动分析仪，日本日立公司生产;K-360型凯氏定氮仪，瑞士BUCHI公司生产。

　　1.3试验方法

　　1.3.1主要活性成分含量测定 总黄酮的提取和测定：精密称取0.5 g样品，置50 mL锥形瓶中，加75%乙醇45 mL，超声提取0.5 h，温度75℃。过滤，用75%乙醇适量洗涤滤渣，滤液置于50 mL容量瓶中，用75%乙醇定容，作为总黄酮待测液。采用亚硝酸钠一硝酸铝一氢氧化钠显色法[13]，在500 nm波长处测定吸光度，试验重复4次。

　　茶多酚测定：按茶叶中茶多酚和儿茶素类含量的检测方法[14]进行检测，试验重复4次。

　　总皂苷的提取和测定：精密称取金花茶样品0.5 g置于锥形瓶中，加入50 mL 75%乙醇，75℃下超声0.5 h，过滤，滤液采用旋转蒸发仪蒸至无醇味，转移至分液漏斗，加入适量水饱和正丁醇萃取2次，合并正丁醇层，采用旋转蒸发仪蒸干，甲醇溶解转移至10 mL容量瓶中，并用甲醇定容，摇匀，作为皂苷待测液。采用香草醛一冰醋酸一高氯酸法[15]，于540 nm处测定吸光度，试验重复4次。

　　粗多糖的提取和测定：参考张恭孝等[16]文献，在总黄酮的提取基础上，将提取总黄酮后的滤渣加水45 mL超声提取th，温度控制在75℃。过滤，用蒸馏水洗涤锥形瓶和滤渣，然后定容于50 mL容量瓶中，作为多糖待测液。采用苯酚一硫酸法[17]，于490 nm处检测吸光度，试验重复4次。

　　1.3.2主要营养成分含量测定 氨基酸含量的测定：按照GB/T 5009.124-2016食品安全国家标准食品中氨基酸的测定，以混合氨基酸标准品为对照品，用氨基酸自动分析仪以外标法测定氨基酸的含量，每个样品测定3次。

　　蛋白质含量的测定：按照GB/T 5009.52016食品安全国家标准食品中蛋白质的测定，采用凯氏定氮法，每个样品测定3次。

　　粗脂肪含量的测定：按照GB/T 5009.6—2016食品安全国家标准食品中脂肪的测定，采用索氏抽提法，无水乙醚为其提取剂，每个样品测定3次。

　　粗纤维含量的测定：按照GB/T 5009.10—2003植物类食品中粗纤维的测定，用酸碱消煮法消煮样品，进行重量测定，每个样品测定3次。

　　灰分含量的测定：按照GB/T 5009.4—2016食品安全国家标准食品中灰分的测定，采用马弗炉灼烧法( 550℃)测定，每个样品测定3次。

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