来源:期刊VIP网所属分类:农业科技发布时间:2021-02-03浏览:次
摘 要:四氢嘧啶是天冬氨酸的环状氨基酸衍生物,广泛应用于化妆品、食品、药品等领域。通过比较了5个不同来源的四氢嘧啶合成基因簇ectABC,发现从专性嗜碱芽孢杆菌(Bacillus pseudofirmus OF4)来源的基因簇整合到大肠杆菌BW25113中后,得到的重组菌pYB1s-BPectABC/BW25113产四氢嘧啶能力最好。利用单因素试验初步优化了pYB1s-BPectABC/BW25113全细胞催化条件: 以100 mmol·L-1天冬氨酸钠和100 mmol·L-1甘油为底物,在100 mmol·L-1 KCl的转化液(pH=7.0)中,30℃下反应24 h,最终四氢嘧啶的产量可达3.10 g·L-1,转化产率达到0.129 g·L-1·h-1。本研究初步得到了四氢嘧啶合成重组菌pYB1s-BPectABC/BW25113,为后续四氢嘧啶的研究奠定了基础。
关键词:四氢嘧啶;全细胞催化;天冬氨酸钠;大肠杆菌;重组
四氫嘧啶,化学名为1,4,5,6四氢2甲基4嘧啶羧酸,是天冬氨酸的环状氨基酸衍生物[1]。四氢嘧啶广泛存在于嗜盐或耐盐的细菌域或古菌域中,是一种对极端温度、高渗透压和干燥等极端环境具有保护性作用的电解质物质[2]。四氢嘧啶因其独特的保护特性被广泛应用于化妆品、食品及药品等领域,包括防止皮肤老化和细胞损伤的化妆品添加剂[3],保护蛋白质的稳定剂[4]、PCR反应的增强剂[5]、微生物的干燥保护剂[6],以及治疗阿尔兹海默症[7]、过敏性鼻炎[8]、特应性皮炎[9]、结肠炎[10]和肺部炎症
[11]等疾病的药物成分。目前四氢嘧啶的交易价格在1000美元·kg-1,是市场上的高价商品[12]。因此,四氢嘧啶成为当下的研究热点之一。四氢嘧啶的生物合成途径最初是在1990年,由Peters等[13]在延长盐单胞菌Halomonas elongata中通过同位素标记以及核磁共振(NMR)方法发现的。它是从合成天冬氨酸家族氨基酸的中心代谢枢纽物质L天冬氨酸β半醛(LASA)开始,由四氢嘧啶3个独特的酶[L2,4二氨基丁酸转氨酶(EctB;EC 2.6.1.76),L2,4二氨基丁酸乙酰转移酶(EctA;EC 2.3.1.178)和四氢嘧啶合成酶(EctC;EC 4.2.1.108)]介导,通过转氨、乙酰化和分子内缩合三步反应合成了四氢嘧啶[13-15]。
当前,四氢嘧啶的生产方法以微生物发酵法为主,微生物发酵法又分为直接发酵法和全细胞催化法[16-17]。直接发酵法生产四氢嘧啶常用的工程菌有嗜盐或耐盐细菌以及异源细菌大肠杆菌和谷氨酸棒状杆菌[18-20],而全细胞催化法主要使用大肠杆菌[21-22]。与直接发酵法相比,全细胞催化法可以避免嗜盐或耐盐细菌带来的高盐诱导问题,不存在对发酵罐及相关设备的腐蚀,具有反应条件温和的优势;全细胞催化使用大肠杆菌,相比于其他细菌更易于培养和实现产业化[19];此外,全细胞催化法生产四氢嘧啶还具有杂质含量少、产物易于分离纯化、菌体可以重复利用等优点,因此全细胞催化法合成四氢嘧啶近年来备受推崇[22]。本研究拟以价格低廉,易于获得的天冬氨酸钠和甘油为底物,合成高价值的四氢嘧啶。通过以大肠杆菌BW25113为底盘细胞,构建了合成四氢嘧啶的工程菌株,并对该工程菌株的全细胞催化条件进行了优化,获得高产四氢嘧啶的菌株及优化条件,为四氢嘧啶的产业化奠定基础。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
1.1.1 主要试剂 质粒提取试剂盒和DNA胶回收试剂盒购自南京诺唯赞生物科技股份有限公司;Gibson酶购自NEB(北京)有限公司;胰蛋白胨和酵母提取粉购自英国Oxoid公司;L天冬氨酸、L阿拉伯糖和氢氧化钠购自中国国药集团有限公司;链霉素购自生工(上海)生物工程有限公司;冰醋酸和乙酸钠西陇化工股份有限公司;其余均是分析纯试剂。
1.1.2 质粒、菌株及培养基 质粒pYB1s、菌株大肠杆菌BW25113均来自本实验保藏。LB培养基(1 L):胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g,氯化钠10 g。ZYM自诱导培养基(1 L):955 mL ZY培养基,20 mL 50×5052,20 mL 50×M,10 mL 20%阿拉伯糖,200 μL 1000×微量元素,200 μL 1 mol·L-1硫酸镁,1 mL链霉素。ZY培养基(1 L):胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g。50×5052(1 L):25%甘油,2.50%葡萄糖。50×M(1 L):1.25 mol·L-1磷酸二氢钠,1.25 mol·L-1磷酸二氢钾,2.5 mol·L-1氯化铵,0.25 mol·L-1硫酸钠。1000×微量元素:50 mmol·L-1氯化高铁,20 mmol·L-1氯化钙,10 mmol·L-1氯化锰,10 mmol·L-1硫酸锌,2 mmol·L-1氯化钴,2 mmol·L-1氯化铜,2 mmol·L-1氯化镍,2 mmol·L-1钼酸钠,2 mmol·L-1硼酸。
1.2 仪器与设备
贝克曼J26冷冻离心机购自美国贝克曼有限公司;waters高效液相购自沃特世科技(上海)有限公司;UV1800分光光度计购自日本岛津公司;自动凝胶成像系统JS68D购自上海培清科技有限公司;蛋白电泳仪购自美国Bio-rad公司;恒温培养箱购自上海智诚分析仪器有限公司。
1.3 试验方法
1.3.1 重组表达质粒的构建 在NCBI上查找得到专性嗜碱芽孢杆菌Bacillus pseudofirmus OF4、伸长盐单胞菌Halomonas elongata ATCC 33173、施氏假单胞菌Pseudomonas stutzeri A1501、支气管败血波氏杆菌Bordetella bronchiseptica S798、拟态弧菌Vibrio mimicus SCCF01等5株菌的四氢嘧啶合成基因簇ectABC序列,委托上海生物工程公司进行合成,通过Gibson酶将目的基因与质粒pYB1s连接构建5个重组质粒,分别转化到大肠杆菌BW25113感受态细胞中,获得pYB1s-BPectABC/BW25113(ectABC基因簇来源于B.pseudofirmus)、pYB1s-HEectABC/BW25113(ectABC基因簇来源于H.elongata)、pYB1s-PSectABC/BW25113(ectABC基因簇来源于P.stutzeri)、pYB1s-BBectABC/BW25113(ectABC基因簇来源于B.bronchiseptica)和pYB1s-VMectABC/BW25113(ectABC基因簇来源于V.mimicus)5株重组菌。
1.3.2 目的基因的诱导表达 挑单菌落于5 mL LB液体培养基中37℃、220 r·min-1培养8~9 h,再按1%接菌量转接至ZYM自诱导培养基中,30℃、220 r·min-1自诱导培养18 h。以菌体(OD600 nm=10)经0.9%氯化钠洗涤2次后破碎离心,取上清和沉淀进行SDS-PAGE分析。
1.3.3 全细胞催化 自诱导18 h后,通过在8000 r·min-1离心5 min收集菌体,用0.9%氯化钠溶液洗涤2次,然后再悬浮在含有100 mmol·L-1磷酸钠缓冲液(pH 7.0)、50 mmol·L-1天冬氨酸钠、100 mmol·L-1 KCl和100 mmol·L-1甘油的反应转化液中,形成细胞悬浮液(OD600 nm=10)。使用50 mL三角瓶中装10 mL细胞悬浮液在30℃,220 r·min-1,进行催化试验,分别取0、3、6、9、21、24 h的转化液1 mL,12000 r·min-1离心1 min,取上清用0.22 μm滤膜过滤完待液相检测(设置3组平行试验)。
1.3.4 全细胞催化体系的优化 為了优化转化液的组分,在全细胞催化试验中比较了不同浓度的天冬氨酸钠 (50、100、150、200和300 mmol·L-1)对四氢嘧啶生产的影响,获得最适天冬氨酸钠浓度之后,在最适的天冬氨酸钠浓度下,比较了不同浓度的甘油(50、100、150、200和300 mmol·L-1),以及KCl (0、50、100、200和300 mmol·L-1)对四氢嘧啶生产的影响;为了评估温度对四氢嘧啶生产的影响,分别在25、30、35、40、45℃下pH 7.0时进行催化试验;为了评估pH的影响,将反应转化液调节至pH为6.0、6.5、7.0、7.5和8.0,并在30℃进行催化试验(设置3组平行试验)。
1.3.5 四氢嘧啶的检测方法 四氢嘧啶检测采用XBridge Amide色谱柱(150 mm×4.6 mm,3.5 μm),检测波长为210 nm,柱温40℃,流速0.8 mL·min-1,流动相配比为75%乙腈和25%甲酸水(含0.1%甲酸)。
2 结果与分析
2.1 目的基因的表达
5株重组大肠杆菌经SDS-PAGE分析,结果见图1。在5株重组大肠杆菌中,EctA的条带在20 kDa左右,EctB的条带在44 kDa 左右,EctC的条带在18 kDa 左右,SDS-PAGE结果与B.pseudofirmus、H.elongata、P.stutzeri、B.bronchiseptica、V.mimicus预测的EctA、EctB和EctC分子质量大小非常相近。此外,通过比较上清液与沉淀,可知上清液中蛋白条带非常明显,而沉淀中蛋白条带不明显,说明大部分蛋白都是可溶性蛋白,此外,也可分析出重组pYB1s-BPectABC/BW25113的EctB表达最好。试验结果表明了四氢嘧啶合成基因成功在大肠杆菌BW25113中表达。
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文章名称: 重组大肠杆菌全细胞催化合成四氢嘧啶
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